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普通高等教育十三五规划教材.全国高等院校规划教材动物生理学实验教程(第2版)/金天明

普通高等教育十三五规划教材.全国高等院校规划教材动物生理学实验教程(第2版)/金天明

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图文详情
  • ISBN:9787302497004
  • 装帧:一般胶版纸
  • 册数:暂无
  • 重量:暂无
  • 开本:其他
  • 页数:231
  • 出版时间:2017-03-01
  • 条形码:9787302497004 ; 978-7-302-49700-4

本书特色

《动物生理学实验教材》第2版可作为全国高等农林水产院校的动物医学、动物科学、动物药学、水产养殖、动植物检疫、生命科学、水族科学与技术、野生动物资源保护、生物学及生物技术等专业学生教材,也可供普通农业职业院校、综合性大学、师范院校生物科学的学生使用,同时还可供成人教育相关专业学生使用,并可作为硕士研究生教学用书、科学工作者的参考书和工具书。 下载课件、获取课件密码、各种资源包以及人工客服,请关注清华社官方微信服务号qhdxcbs_js,一站式帮您解决各种图书问题。

内容简介

《动物生理学实验教程》(第2版)全书分为三部分:靠前部分(靠前章至第七章)介绍了动物生理学实验的教学目的和实验方法、生物机能实验系统、实验动物的基本知识、实验动物的选择方法、实验室安全及对实验者的要求、动物实验的基本技术方法、动物实验外科操作技术与常见手术方法;第二部分(第八章至第十六章)介绍了动物生理学的70个基本实验,主要涉及细胞的基本功能、血液生理、血液循环生理、呼吸生理、消化生理、能量代谢和体温调节、泌尿生理、神经与感觉生理、内分泌和生殖生理;第三部分(第十七章)介绍了设计性实验的基本原则、过程和实验举例。在学生已掌握动物生理学实验的基本设计原理及实验技能的基础上,通过对设计性实验的基本思路、基本环节、基本程序和具体步骤的详细讲授,将实验设计引入到实验教学过程中,弥补了设计性实验的不足。

目录

VII VI 动物生理学实验教程(第2版) 目 录 目.录 CONTENTS **章 绪论..........................................................1 一、动物生理学实验教学内容和目的........1 二、动物生理学的研究方法........................1 三、动物生理学实验教学的整合及 对学生综合能力的培养........................2 第二章 BL-420N生物信号采集 与分析系统..........................................8 一、系统概述................................................8 二、面板介绍................................................9 三、使用说明..............................................10 第三章 实验动物的基本知识....................19 **节 常用实验动物的种类 及应用............................................19 一、蟾蜍和青蛙..........................................19 二、家兔......................................................20 三、小鼠......................................................23 四、大鼠......................................................25 五、猪..........................................................27 六、狗..........................................................28 七、猫..........................................................30 八、鸡..........................................................31 九、鸽..........................................................32 十、山羊......................................................32 十一、绵羊..................................................33 十二、马......................................................33 十三、牛......................................................33 第二节 实验动物的营养需要及 饲养管理.......................................34 一、动物所需营养素的种类及影响 营养需要量的因素..............................34 二、常用实验动物的饲养标准和 营养需要特点......................................35 三、实验动物饲料的分类及其营养 价值评定..............................................37 四、实验动物饲养的辅助设施和设备......38 第三节 实验动物常用操作技术...........39 一、动物实验中常用的手术方法..............39 二、实验动物的急救..................................41 三、实验动物的护理..................................43 第四章 实验动物的选择方法....................44 **节 选择实验动物的 基本原则.......................................44 一、相似性原则..........................................44 二、特殊性原则..........................................45 三、可靠性原则..........................................45 四、标准化原则..........................................46 五、重复性原则..........................................46 六、可控性原则..........................................46 七、规格化原则..........................................46 八、经济性原则..........................................46 第二节 常见动物实验中实验动 物的选择.......................................47 一、实验动物的来源及遗传背景..............47 二、实验动物的种类..................................47 三、实验动物的品系..................................48 四、实验动物的性别..................................48 五、实验动物的年龄..................................49 六、实验动物的体重..................................49 七、实验动物的生理及健康状况..............49 八、实验动物的等级..................................50 第三节 实验设计与技术操作对 结果的影响及控制....................51 第五章 动物生理学实验室的生物 安全及对实验者的要求...............53 **节 动物生理学实验室的生物 安全................................................53 一、病原体分级..........................................53 二、生物安全等级......................................53 三、影响动物实验室的环境因素..............53 第二节 动物生理学实 验中对实验者的要求................55 一、实验动物的订购与运输......................56 二、实验人员的保护..................................56 第六章 动物实验的基本技术方法..........58 **节 动物实验前的准备....................58 一、样本与剂量..........................................58 二、预实验与筛选......................................59 三、手术动物的准备..................................60 第二节 动物实验设计与分组................60 一、实验设计的基本原则..........................60 二、常用的实验设计方法..........................62 第三节 实验动物的抓取与固定...........63 一、小鼠的抓取与固定..............................64 二、大鼠的抓取与固定...............................64 三、豚鼠的抓取与固定...............................65 四、兔的抓取与固定...................................65 五、犬的抓取与固定...................................66 六、猫的抓取与固定...................................67 七、蛙类的抓取与固定...............................67 第四节 常见实验动物性别鉴定与 日龄判断.......................................67 一、实验动物性别鉴定...............................68 二、实验动物日龄的判断...........................68 第五节 动物标记法及去毛法................69 一、动物标记法...........................................69 二、动物去毛法...........................................70 第六节 动物的麻醉方法.........................71 一、全身麻醉...............................................71 二、局部麻醉...............................................74 三、椎管内麻醉...........................................75 四、动物麻醉深度的判定...........................76 第七节 动物给药途径与方法................76 一、注射给药...............................................77 二、经口给药...............................................79 三、吸入给药...............................................79 四、气管注入法...........................................80 第八节 动物血液采集方法....................80 一、实验动物血液的采集...........................80 二、常用实验动物的采血部位及方法.......82 第九节 动物各种体液的采集方法......85 一、尿液的采集...........................................85 二、胆汁的采集...........................................86 三、胰液的采集...........................................86 四、淋巴液的采集.......................................87 五、唾液的采集...........................................87 六、阴道液的采集.......................................87 七、精液的采集..........................................87 八、乳汁的采集..........................................88 九、实验动物粪便的采集..........................88 第十节 受试动物的临床检查方法......88 一、肝脏活检方法......................................88 二、淋巴结活检方法..................................88 三、骨组织活检方法..................................88 四、阴道组织活检方法..............................89 第十一节 动物的处死方法....................89 一、大鼠和小鼠..........................................89 二、犬、猫、兔、豚鼠..............................89 第七章 动物实验外科操作技术与 常见手术方法...................................91 **节 术前准备及术后处理................91 一、术前准备..............................................91 二、术后处理..............................................96 第二节 动物实验外科基本 操作技术.......................................97 一、组织分离..............................................97 二、组织切开..............................................98 三、止血......................................................99 四、打结....................................................100 五、缝合....................................................101 六、拆线....................................................103 第八章 细胞的基本功能............................104 实验一 坐骨神经-腓肠肌标本的 制备及生物电现象的观察......104 实验二 刺激与反应的关系..................106 实验三 蛙坐骨神经干动作电位的 观察..............................................109 实验四 神经干兴奋不应期的测定.......111 实验五 强度-时间曲线的测定..........112 实验六 神经-肌肉接头兴奋的传递 和阻滞..........................................114 实验七 蛙坐骨神经-腓肠肌标本 中神经、肌肉兴奋时的电 活动、肌肉收缩以及不同 因素对观察指标的影响 (综合性实验)............................115 实验八 骨骼肌终板电位的记录及 药物的影响(综合性实验)......117 实验九 影响神经动作电位传导 速度的因素(设计性实验).......118 第九章 血液生理............................................119 实验一 血细胞比容的测定..................119 实验二 红细胞渗透脆性的测定.........120 实验三 红细胞沉降率的测定..............122 实验四 血细胞计数................................123 实验五 血红蛋白含量的测定..............126 实验六 出血时间和凝血时间的 测定..............................................127 实验七 影响血液凝固的因素..............128 实验八 ABO血型鉴定和交叉 配血实验.....................................130 第十章 血液循环生理.................................132 实验一 蛙心起搏点观察.......................132 实验二 蛙类微循环的显微观察.........133 实验三 蛙心的期前收缩与 代偿间歇.....................................135 实验四 蛙心脏灌流实验观察..............137 实验五 动脉血压的直接测定与 影响因素.....................................140 实验六 影响心输出量的因素及 其实验观察(综合性实验)......142 第十一章 呼吸生理......................................145 实验一 家兔胸内压的测定和 开放性气胸的观察..................145 实验二 家兔呼吸运动的调节..............146 实验三 膈肌电活动的记录..................149 实验四 呼吸运动、胸内压及 膈神经放电的同步观察 (综合性实验)............................150 第十二章 消化生理......................................154 实验一 离体小肠平滑肌的 生理特性.....................................154 实验二 唾液分泌的观察.......................156 实验三 胰液和胆汁的分泌..................158 实验四 胃内容物的分层分布..............160 实验五 猪胃液的分泌............................161 实验六 胃肠道运动的直接观察.........163 实验七 反刍动物咀嚼与瘤胃运动 的描记..........................................164 实验八 反刍活动观察............................165 实验九 瘤胃内容物的观察..................167 实验十 肠内容物渗透压对 小肠物质吸收的影响..............168 第十三章 能量代谢和体温调节.............169 实验一 小白鼠能量代谢的测定.........169 实验二 动物体温的测定.......................170 实验三 甲状腺激素对代谢的 影响..............................................171 第十四章 泌尿生理......................................173 实验一 影响尿生成的因素..................173 实验二 循环、呼吸、泌尿功能的 综合观察.....................................175 第十五章 神经与感觉生理.......................179 实验一 脊髓反射的基本特征和 反射弧的分析............................179 实验二 大脑皮层运动机能定位和 去大脑僵直................................181 实验三 损伤小鼠一侧小脑对躯体 运动的影响................................184 实验四 破坏豚鼠一侧迷路 的效应..........................................185 实验五 小白鼠电防御条件反射的 建立、分化与消退..................186 实验六 家兔大脑皮层诱发电位.........187 实验七 豚鼠耳蜗微音器电位的 观察..............................................189 实验八 毁蛙脑不同部位引起 骨骼肌运动的观察..................191 实验九 交互抑制.....................................192 实验十 植物性神经末梢递质 释放的观察................................194 第十六章 内分泌和生殖生理..................196 实验一 摘除肾上腺对小鼠耐受力 的影响..........................................196 实验二 摘除甲状旁腺对狗神经和 肌肉兴奋性的影响..................197 实验三 胰岛素和肾上腺素对动物 血糖水平的影响.......................199 实验四 摘除垂体对大鼠体内某些 内分泌腺发育的影响..............200 实验五 垂体激素对蛙卵巢 的作用..........................................201 实验六 甲状腺激素对蝌蚪发育的 影响..............................................202 实验七 甲状腺激素的放射免疫 测定..............................................203 实验八 小鼠发情周期的检查..............205 实验九 雌激素对雌性小鼠生殖 器官发育的影响.......................206 实验十 雄激素对鸡冠发育的影响....207 实验十一 精子耗氧强度的测定.........208 实验十二 精子活力的检查和 畸形率测定............................208 实验十三 蛙的受精方法及卵裂的 观察..........................................211 实验十四 大鼠离体子宫平滑肌 运动的观察............................213 实验十五 甲状腺对大鼠能量代谢率 的影响及其分泌调节(综 合性实验)..............................214 第十七章 设计性实验.................................217 **节 设计性实验的基本原则.........217 第二节 实验设计的基本过程..............218 第三节 设计性实验举例.......................221 实验一 低温应激对小鼠不同组织 脂质过氧化状态的影响..........221 实验二 人参对游泳应激小鼠 血清葡萄糖、尿素和 肌酐含量的影响......................222 实验三 川芎水煎液对离体 蟾蜍心电图的影响..................222 参考文献................................................................224 附录..........................................................................226 附录一 常用生理溶液的配制..............226 附录二 实验动物的一般常数..............227 附录三 常用注射麻醉剂、消毒 药品和洗涤液的参考剂 量、配置及用途.......................228 附录四 常用血液抗凝剂的配制及 方法..............................................229 附录五 动物给药量的确定及人与 动物的用药量换算方法.........230
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节选

从严格意义上讲,教学和科研等工作中使用的动物应称为实验用动物,它主要包括以下三大类动物:①实验动物,指为了科学研究、教学、生物制品或药品鉴定、诊断等目的而经人工培育,对其携带的微生物实行控制,遗传学背景明确或来源清楚的动物;②野生动物,指直接从野外捕获,性状未受人为控制的动物;③家畜(禽),指为满足人类社会生活需要而繁殖和饲养的动物。 现将动物生理学实验中经常用到的蟾蜍、青蛙、家兔、小鼠、大鼠、猪、狗、猫、鸡、鸽、山羊、绵羊、马、牛 14种动物分别介绍如下。 一、蟾蜍和青蛙 蟾蜍和青蛙均属两栖纲、无尾目,蟾蜍属蟾蜍科,青蛙属蛙科。它们品种很多,是脊椎动物由水生向陆生过渡的中间类型。 蟾蜍和青蛙生活在田间、池边等潮湿环境中,以昆虫等幼小动物为食料。冬季潜伏在土壤中冬眠,春天出土,水中产卵,体外受精。幼体称为蝌蚪,形似小鱼,用鳃呼吸,有侧线,以水中植物为主要食料。幼体经变态发育为成体,尾巴消失后到陆地上生活,用肺呼吸,同时其皮肤分泌黏液,辅助呼吸。蟾蜍和蛙身体背腹扁平,左右对称,头为三角状,眼大并突出于头部两侧,有上、下眼睑和瞬膜以及鼻、耳等感受器官。前肢有 4趾,后肢有 5趾,趾间有蹼,适于水中游泳。其器官、系统逐渐完善,反映出由水生向陆生过渡的特征。雄蛙头部两侧各有一个鸣囊,是发声的共鸣器(蟾蜍无鸣囊),雄蛙的叫声特别响亮。蟾蜍背部皮肤上有许多疣状突起的毒腺,可分泌蟾蜍酥,尤以眼后的椭圆状耳腺分泌毒液*多。蟾蜍每年 2月下旬至 3月上旬发情一次,发情后于 4~7月间排卵,产仔 1 000~4 000个,寿命 10年。蟾蜍和青蛙在我国分布广泛,夏、秋季各地均容易捕捉,也易养活。在捕捉和饲养等方面,蟾蜍比青蛙要方便,故在实验中广泛使用。 蟾蜍和青蛙是生物实验中常用的动物,特别是在生理、药理实验中更为常用。蛙类的心脏在离体情况下仍可有节奏地博动很久,所以常用来研究心脏的生理功能、药物对心脏的作用等。蛙类的腓肠肌和坐骨神经可以用来观察外周神经的生理功能,也可观察药物对横纹肌或神经 -肌肉接头的作用等。蛙还常用来作脊髓休克、脊髓反射和反射弧的分析,以及肠系膜上的微循环观察等实验,还常利用蟾蜍下肢血管灌注方法观察肾上腺素和乙酰胆碱等药物对血管的作用等。 二、家兔 (一)家兔的生物学特性和生理解剖特点 (1)家兔属哺乳纲、啮齿目、兔科、草食性哺乳动物。家兔体小力弱,胆小怕惊,怕热,怕潮,喜欢安静、清洁、干燥、凉爽的环境,不能忍受污秽的环境条件。 (2)家兔饲养以青粗饲料为主,精饲料为辅。家兔喜欢独居,白天活动少,都处于假眠或休息状态,夜间活动大,吃食多。有啃木、扒土的习惯。喜欢直接从肛门口吃粪,有时晚上也吃自己白天排出的粪便。因其下段肠管可吸收粪便中未消化吸收的粗蛋白和维生素,因此,如用兔进行营养实验时,应控制其食粪习性,否则会影响实验结果。哺乳期仔兔也有吃食兔粪的习性,故在断奶兔粪便中,经常可以查出球虫卵囊。 (3)家兔胸腔内构造与其他动物不同,胸腔中央由纵膈连于顶壁,底壁及后壁之间将胸腔分为左、右两部,互不相通,纵膈由膈胸膜和纵膈胸膜两层纵膈膜组成。肺被肋胸膜和肺胸膜隔开,心脏又被心包胸膜隔开。因此,开胸后打开心包胸膜暴露心脏进行实验操作时,只要不弄破纵膈膜,动物就不需要做人工呼吸,而猫、狗等其他动物开胸后一定要做人工呼吸才能进行心脏操作。 (4)家兔的肠道非常长(约为体长的 8倍),肠的摆动波幅较大。兔肠壁薄,对儿茶酚胺类药物和其他药物反应灵敏,而猫和狗等肠壁厚,对药物反应迟钝。未妊娠兔的离体子宫对 α受体激动剂十分敏感,可使之强烈收缩。家兔回肠与盲肠相接处膨大形成一层厚壁的圆囊,称圆小囊,这是兔特有的免疫器官。圆小囊内壁呈六角形蜂窝状,里面充满着淋巴组织,其黏膜可不断分泌碱性液体,中和盲肠中微生物分解纤维素所产生的各种有机酸,利于消化吸收。家兔的总胆管容易辨认,壶腹部明显地呈现于十二指肠的表面,由于组织纤细,操作时需注意。家兔的甲状旁腺分布比较分散,位置不固定,除在甲状腺周围外,有的甚至分布到胸腔内主动脉弓附近。 (5)家兔颈部都有减压神经独立分支。而人、马、牛、猪、狗和猫的减压神经并不单独行走,而是行走于迷走、交感神经干中。家兔颈神经血管束中有三根粗细不同的神经,*粗、白色者为迷走神经;较细、呈灰白色者为交感神经;*细者为减压神经,位于迷走神经和交感神经之间,属于传入性神经,其神经未梢分布在主动脉弓血管壁内。 (6)家兔后肢膝关节的屈面腘窝部有一个较大的卵圆形淋巴结,长约 5mm,在体外极易触摸和固定,适于向淋巴结内注射药物等实验。 (7)家兔眼球甚大,虹膜内有色素细胞,眼睛的颜色由该色素细胞所决定。白家兔眼睛的虹膜完全缺乏色素,眼内由于血管内血色的透露,看起来呈红色。家兔耳大,血管清晰,便于注射和取血。 (8)家兔属于刺激性排卵动物。雌兔每两周发情一次,每次持续 3~4天。发情期间,雌兔卵巢内一次能成熟许多卵子,但这些卵子并不排出,只有经雄兔的交配刺激后 10~12h才能排出,这种现象称刺激性排卵。如果不让雌兔交配,则成熟的卵子经 10~16天后全部被吸收,随后新的卵子又开始成熟。哺乳动物中家兔和猫都属于这种类型,因此,兔、猫均可因外来刺激诱发排卵,根据诱发时间可得知何时排卵,并据此确定何时进行剖腹手术,切开子宫取胎兔。 (9)家兔对射线十分敏感,照射后常发生休克样的特有反应,有部分家兔在照射后立即或不久后死亡,其休克的发生率、死亡率与照射剂量呈一定的线性关系。 (10)球虫病是危害家兔*严重、感染范围*广的一种寄生虫病,幼兔*易感染,死亡率高达 80%。有 7种球虫可引起兔球虫病, 6种爱美耳属球虫专门侵犯肠管使家兔患肠球虫病, 1种斯狄氏属球虫专门侵犯肝脏使兔患肝球虫病,患兔肝表面可见粟米大小的白色微黄色结节,刺破后有白色脓汁流出,在显微镜下观察,可见其中有大量的球虫卵囊,患兔肝功能受到损害,因此选择家兔做肝功能测定时应特别注意这一特点。另外,家兔对许多病毒和致病菌都很敏感。 (11)家兔正常体温 39.0(38.5~39.5)℃、皮肤温度 33.5~36℃,心跳频率 258±2.8次 /分,动脉血压 14.64(12.64~17.29)kPa,循环血量 59±2.3mL/kg体重,呼吸频率 51(38~60)次 /分,潮气量 21.0(19.3~24.6)mL,通气率 1 070(800~1 140)mL/min,血液 pH为 7.58左右,红细胞相对密度为 1.090,血浆相对密度为 1.024~1.037,血容量占体重的 5.46%~8.7%,染色体为 22对,寿命 8年。

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