细胞生物学实验教程(第二版)

目录 第二版前言 **版前言 **部分 基础性实验 实验1 普通光学显微镜的使用、细胞的形态观察和大小测定 2 实验2 暗场显微镜和相差显微镜的使用 12 实验3 荧光显微镜的使用 18 实验4 细胞器的活体染色 25 实验5 细胞内核酸的原位显示 29 实验6 细胞内蛋白质的定位 32 实验7 细胞内酶的定位 34 实验8 细胞内糖类的显示 38 实验9 细胞内脂类的显示 40 实验10 酶联免疫吸附测定法 42 实验11 细胞活性的鉴定 47 实验12 细胞膜的通透性和巨噬细胞的吞噬活动 50 实验13 细胞凝集反应 54 实验14 果蝇唾腺细胞巨大染色体的观察 56 实验15 细胞的减数分裂 59 第二部分 综合性实验 实验16 常用显微镜制片技术 64 实验17 细胞骨架的光学显微镜观察 73 实验18 动物骨髓细胞染色体标本的制备 79 实验19 人外周血淋巴细胞培养与染色体标本制备 82 实验20 植物细胞染色体标本的制备 86 实验21 显示染色体核仁组织区的银染色法 88 实验22 荧光原位杂交技术定位端粒序列 91 实验23 细胞器的分离和鉴定 94 实验24 动物细胞培养 98 实验25 细胞增殖能力的检测——集落形成实验 106 实验26 MTT比色法检测细胞存活状态 109 实验27 培养细胞生长状态评价——有丝分裂指数和生长曲线测定 111 实验28 细胞同步化 114 实验29 流式细胞术测定细胞周期 117 实验30 动物细胞融合 120 实验31 植物原生质体的分离、融合和培养 124 实验32 细胞转染技术 128 第三部分 设计性实验 实验33 完整叶绿体的分离、纯化及观察 132 实验34 逆境对植物细胞膜系统的损伤和破坏 136 实验35 植物细胞悬浮培养 138 实验36 单细胞凝胶电泳试验检测细胞DNA损伤 140 实验37 环境有害物质对微核的诱导和检测 144 实验38 细胞凋亡的诱导和检测 147 实验39 植物次生代谢物质对肿瘤细胞增殖的影响 152 第四部分 附录 附录Ⅰ 常用染料简介和常用染色剂配方 156 附录Ⅱ 细胞生物学实验常用缓冲液的配制 165 附录Ⅲ 细胞生物学实验常用培养基的配制 172 附录Ⅳ 常用生物固定液 178 附录Ⅴ 封片剂和粘贴剂 184 附录Ⅵ 光学显微镜的维护 185 附录Ⅶ 电子显微镜技术 187 附录Ⅷ 器械的清洗与消毒 193 附录Ⅸ 实验室常用技术参数 196 附录Ⅹ 常用植物激素、抗生素的配制 202 附录Ⅺ 部分动物、植物及人的染色体数目 203 附录Ⅻ 撰写细胞生物学实验报告的要求 204 参考文献 212